Bemisia sp poss. tabaci

Taxonomia
Bemisia sp poss. tabaci
Sweet potato whitefly
Insecta
hemiptera
Aleyrodidae
Establecimiento en Galápagos
1998
En productos comestibles
Distribución en Galápagos
Sombrero Chino
árida
Distribución Mundial
Cosmopolita.
Biología/Ecología
Vector/Se alimenta de la savia de plantas
Polífago
Cacabus
Hasta recientemente, B. tabaci fue principalmente conocida como una plaga de campos de cultivo en países tropicales y subtropicales, como yuca, algodón, patata dulce, tabaco y tomate. Las poblaciones del "No-B-biotipo B" de B. tabaci , en casi todos los casos, tienen una gama restringida de plantas hospederas dentro de la especie mostrada en las tablas y pueden incluir muchas especies indígenas de malezas no conocidas. Algunos "No-B-biotipo B" han mostrado ser monófagos. Sin embargo, "No-B-biotipo B" dentro de un país podría tener un rango compuesto de hospederos de muchas especies de plantas y cultivos. Solo el biotipo B está actualmente documentado siendo casi polífago, aunque recientes estudios de laboratorio han demostrado que solo un pequeño número de individuos dentro de algunas poblaciones de biotipos B son capaces fácilmente de cambiar sus hospederos. La progenie de estos individuos ha demostrado ser altamente polífaga. Estados de plantas afectadas: Estado de floración, semillero y crecimiento vegetativo. Hospederos primarios: Abelmoschus esculentus (okra), Arachis hypogaea (maní), Brassicaceae (cultivos de crucíferas), Cajanus cajan, Capsicum annuum (ají), Cucumis sativus (pepino), Cucurbitaceae (cucurbitáceas), Euphorbia pulcherrima, Fabaceae (plantas leguminosas), Gerbera jamesonii, Glycine max (soya), Gossypium (algodón), Ipomoea batatas (patata dulce), Lactuca sativa (lechuga), Lycopersicon esculentum (tomate), Manihot esculenta (yuca), Nicotiana tabacum (tabaco), Phaseolus (fréjol), Phaseolus vulgaris (fréjol), Piper nigrum (pimienta negra), Sinningia speciosa, Solanum melongena (berenjerna), Solanum tuberosum (papa). Hospederos silvestres: Ageratum, Chenopodium, Hibiscus, Malva, Solanum.
Los huevos son depositados en grupos circulares, en el envés de las hojas, con el extremo final tocando la superficie y el largo axis perpendicular a la hoja. Ellos son anclados por un pedicelo insertado en una fina faja hecha por la hembra y no dentro del estoma como en el caso de algunos otros aleyrodidos. Los huevos son de coloración blanquecina apenas son depositados, pero gradualmente se tornan marrones. Cada hembra deposita sobre los 160 huevos. La eclosión ocurre luego de 5-9 días a 30°C dependiendo de las especies hospederas, temperatura y humedad. Al eclosionar, el primer instar es liso, oval y parecido a una escama y es la única etapa larval móvil. Este se mueve a una localización donde el alimento este disponible sobre la superficie baja de la hoja donde muda y se convierte en sésil en las restantes etapas ninfales. Los primeros tres estados ninfales culminan en 2-4 días cada uno (dependiendo de la temperatura). El cuarto estado ninfal es llamado "puparium" y tiene aproximadamente 0.7 mm de largo. La pupación verdadera en el ciclo de vida de la mosca blanca es debatible ya que no ocurre en otras familias de Homopteros, aunque cuando el último estadío (cuarto instar ninfal) luego de la apolysis se ha completado, típicamente es referido como una pupa. La pupación termina en alrededor de 6 días y dentro del período tardío, la metamorfosis a adulto ocurre. La emergencia de adultos se da a través de la ruptura en forma de T en el pupario y expanden sus alas antes de cubrirlas él mismo con cera de las glándulas del abdomen. La copulación empieza 12 a 20 horas luego de la emergencia y toma lugar varias veces a través del ciclo de vida del adulto. Una hembra puede vivir por 60 días, aunque el ciclo de vida de los machos es generalmente más corto, siendo entre 9 y 17 días. A veces 11 a 15 generaciones pueden ocurrir en un año.
Adultos de B. tabaci no vuelan muy eficientemente pero, una vez en el aire, pueden viajar a largas distancias transportados por el viento. Todos los estados de la plaga son apropiados para ser llevados sobre material de plantas y flores de corte de especies hospederas. El mercado internacional en Poinsettia es considerado como uno de los mayores medios de diseminación de el biotipo B de B. tabaci dentro de la región de la EPPO.
La mayoría de biotipos de B. tabaci pueden ser vectores de alrededor de 60 virus de plantas de los géneros Geminivirus, Closterovirus, Nepovirus, Carlavirus, Potyvirus y un "rod-shaped" ADN virus. Los biotipos que son vectores pobres, parecen ser debido a su incapacidad para alimentarse de especies alternativas de plantas hospederas. La mosca blanca transmisora de Geminivirus, ahora denominados Begomovirus, es en gran medida la más importante especie agrícola, causando pérdidas en los cultivos entre 20 y 100%. Begomovirus causa un rango de diferentes síntomas que incluyen mosaicos amarillos, amarillamiento de venas, hojas encrespadas, atrofiamiento y engrosamiento de venas. Un millón de hectares de algodón están siendo diezmadas actualmente en Pakistán por la enfermedad del enrollamiento de la hoja del algodón (CLCuV) e importantes cultivos de subsistencia en África como la yuca son afectados por Begomovirus así como por "African cassava mosaic virus" (ACMV). Cultivos de tomate a través del mundo son particularmente suceptibles a diferentes Begomovirus y la mayoría exhiben síntomas de "enrollamiento amarillo de la hoja". Este ha motivado su caracterización inicial como "Tomato yellow leaf curl virus" (TYLCV). TYLCV ha sido registrado recientemente en el Nuevo Mundo, así también algunos otros Begomovirus como "Tomato mottle virus" (EPPO/CABI, 1996), "Tobacco leaf curl" (TLCV), "Sida golden mosaic" (SiGMV), "+W224squash leaf curl" (SLCV), "Cotton leaf crumple" (CLCV) y "Bean golden mosaic" (BGMV) algunos de los cuales causan graves pérdidas en sus respectivos hospederos. Infecciones duales también han ocurrido (Bedford et al., 1994c). Actualmente Europa tiene cinco Begomovirus conocidos. Tres han demostrado no ser ampliamente transmisibles por B. tabaci: "Honeysuckle yellow vein mosaic" (también conocido como "Tobacco leaf curl"), "Abutilon mosaic" e "Ipomea yellow vein", posiblemente a través de algunos años de propagacion vegetativa de sus plantas hospederas ornamentales. Los otros son dos diferentes virus transmisibles "Tomato yellow leaf curl viruses" que son causantes de las mayores pérdidas de cultivos dentro de la industria del tomate en España, Portugal, Italia y las Islas Canarias. Especies de malezas indígenas como Solanum nigrum y Datura stramonium también son conocidas como reservorios de campo de este virus del tomate y puede ser la fuente de otros todavía no identificados dentro de Europa. Dos Closterovirus transmitidos por B. tabaci están ahora también afectando a cultivos en Europa incluyendo las Islas Canarias. "Cucurbit yellow stunting disorder", está causando severos daños en pepinos y melones en el sur de Europa, junto con "Tomato chlorosis virus". Hay también reportes de un tercer Closterovirus, "Tomato infectious chlorosis", en Europa aunque este virus corrientemente parece no ser de significancia económica. Sin embargo un Bemisia transmisor del virus "Cucumber yellow vein virus", apareció en cultivos de pepino al sur de España a principio del 2000. A pesar de que existe un programa de destrucción de cultivos para erradicar estos virus, recientemente se ha diseminado en cultivos de melón de la región. Biotipo K En Pakistán el biotipo K es el responsable de la diseminación de la enfermedad viral del algodón "cotton leaf curl disease" (CLCuD). Esta enfermedad ha sido un serio problema a principios de 1990, rápidamente afectó a millones de hectáreas de algodón. Biotipo Q El biotipo Q es encontrado a lo largo de la Península Ibérica, alrededor del Mediterráneo (incluyendo Israel) y en las Islas Canarias. Se piensa que este es el biotipo indígena de estas regiones, aunque este coexiste con el biotipo B en Israel, Italia y las Islas Canarias. Una población del biotipo B fue registrada dentro de la población del biotipo Q en los alrededores de Almeria al sur de España en 1995. Tal parece que esta población no pudo establecerse pues recientes registros solo identifican el biotipo Q. El biotipo Q, en años recientes, ha sido expuesto a aplicaciones intensivas de insecticidas y dentro de áreas que exhiben agricultura extensiva por lo que las poblaciones presentan un alto nivel de resistencia. El uso de programas de control IPM está actualmente restringido a cultivos que son suceptibles a los virus. Este es un caso particular con "Tomato yellow leaf curl viruses" que es transmitido de una forma muy eficiente por B. tabaci. Debido a la resistencia de insecticidas, gran número de biotipos Q frecuentemente infectan cultivos dentro del sur de Europa, resultando en una rápida diseminación de virus en nuevos cultivos plantados. El crecimiento de cultivos de tomate en áreas del sur de España y Morocco recientemente han sufrido pérdidas del 100% y "tomato yellow leaf curl virus" se ha diseminado a cultivos de Phaseolus vulgaris y Capsicum annum.
árido, tropical sabana y cálido templado
Impacto en Galápagos
7d
n
Impacto en otras regiones del mundo
I (Caribe), PA (Pacífico), uno de los 100 invasoras globales más serias
B. tabaci ha sido registrado como una plaga menor en algodón y otros cultivos tropicales y semitropicales dentro de las partes cálidas del mundo y hasta recientemente ha sido fuertemente manejada con un rango de insecticidas. Actualmente, 16 biotipos diferentes de B. tabaci han sido identificados y algunos más aguardan su caracterización. Estudios sobre los biotipos que están listos para ser identificados muestran que algunos están asociados solo con un pequeño rango de plantas hospederas. Algunos biotipos pueden ser descritos siendo casi monófagos y son usualmente de pequeña significancia económica. Sin embargo, es posible que estos biotipos monófagos podrían adaptarse y ser una plaga significativa si regularmente tienen a su disposición un cultivo hospedero. Algunos biotipos de ciertas áreas se han convertido en plagas mayores, frecuentemente dentro de grandes áreas de monocultivo donde ellos están regularmente expuestos a insecticidas. En estos casos los biotipos han adquirido rápidamente resistencia a casi todos los insecticidas actualmente disponibles. La alimentación de los adultos de B. tabaci y ninfas causan manchas cloróticas que aparecen sobre las superficie de las hojas. Dependiendo del nivel de infestación, estas manchas pueden juntarse hasta que toda la hoja se torne amarilla, aparte de las áreas inmediatamente alrededor de las venas. Cada hoja más tarde es desprendida. La miel producida por la alimentación de las ninfas cubren la superficie de las hojas y pueden causar una reducción del potencial fotosintético cuando son colonizados por hongos. La miel puede también malformar las flores y en el caso del algodón, pueden causar problemas en procesamiento de las fibras. Con infestaciones altas, el peso de la planta, número de internudos y calidad y cantidad de cosecha puede ser afectado (por ejemplo en algodón).
Control
Parasitoides: Encarsia acaudaleyrodis Encarsia adrianae atacando ninfas Encarsia bimaculata Encarsia brevivena atacando ninfas Encarsia cibcensis atacando ninfas Encarsia davidi Encarsia formosa atacando ninfas Encarsia hispida Encarsia inaron atacando ninfas Encarsia japonica Encarsia longifasciata Encarsia lutea atacando ninfas Encarsia luteola atacando ninfas Encarsia meritoria atacando ninfas Encarsia mineoi Encarsia moyhuddini atacando ninfas, adultos Encarsia nigricephala atacando ninfas, adultos Encarsia pergandiella atacando ninfas, adultos Encarsia porteri atacando ninfas Encarsia protransvena Encarsia reticulata atacando ninfas, adultos Encarsia sophia Encarsia strenua atacando ninfas Encarsia transvena atacando ninfas, adultos Encarsia tricolor atacando ninfas, adultos Encarsia tricolor Eretmocerus corni atacando ninfas, pupas, adultos Eretmocerus diversiciliatus atacando ninfas, adultos Eretmocerus eremicus atacando ninfas, adultos Eretmocerus haldemani atacando ninfas, adultos Eretmocerus mundus atacando ninfas, pupas, adultos Predadores: Chrysoperla carnea atacando ninfas, adultos Coccinella septempunctata atacando ninfas, adultos en India Coccinella undecimpunctata atacando ninfas, adultos Coenosia attenuata atacando ninfas, adultos Delphastus pusillus atacando ninfas, adultos Deraeocoris pallens atacando ninfas, adultos Euseius hibisci atacando ninfas, adultos en Jordan, Morocco Euseius scutalis atacando ninfas, adultos Franklinothrips vespiformis atacando ninfas, adultos Geocoris ochropterus atacando ninfas, adultos en India Geocoris punctipes atacando ninfas, adultos Laius venustus atacando ninfas, adultos Mallada boninensis atacando ninfas, adultos en India Microlestes discoidalis atacando ninfas, adultos Nabis capsiformis atacando ninfas, adultos Nephaspis maesi atacando ninfas, adultos Orius albidipennis atacando larvas, ninfas, adultos en Pakistan Paragus compeditus atacando ninfas, adultos Phidippus audax atacando ninfas, adultos Scymnus syriacus atacando ninfas, adultos Serangium parcesetosum atacando huevos
Bibliografía
C.E. Causton/Jensen
Waterhouse 1997, Kairo &Ali 2003, CABI 2004, http://64.233.161.104/search?q=cache:5jFdJ0zJQnEJ:entomology.ucdavis.edu/scalewebpages/Sternorrhyncha-Chapter.pdf+Aleurothrixus+floccosus+transmit&hl=en, http://www.issg.org/database/species/ecology.asp?si=106&fr=1&sts=tss